Старший научный сотрудник отдела биомедицинских технологий и тканевой инженерии ФГБУ «НМИЦ ТИО им. ак. В.И. Шумакова» Минздрава РФ. В 2022 г. была присуждена ученая степень кандидата биологических наук по специальности 3.1.14 «Трансплантология и искусственные органы». Область научных интересов: разработка и исследование тканеспецифических матриксов на основе децеллюляризованных тканей и органов, разработка тканеинженерных конструкций печени и хряща на основе клеточных структур и тканеспецифических матриксов. В 2024 г. стала лауреатом конкурса Всероссийская научная школа «Медицина молодая» и приняла участие в научно-образовательной программе «Лидеры инноваций». В 2022 г. стала лауреатом премии В.П. Демихова «За исследования в области тканевой инженерии и искусственных органов и трансплантологии» в рамках V Национального конгресса по регенеративной медицине. Работы были отмечены на IV Сеченовском международном биомедицинском саммите 2020 (SIBS-2020) (присуждено 3 место в конкурсе молодых ученых за доклад «Efficiency of using supercritical carbon dioxide for decellularization of articular cartilage»), на V Сеченовском международном биомедицинском саммите 2021 (SIBS-2021) (присуждено 1 место за постер «Injectable forms of collagen-containing biomimetics of the extracellular matrix and mesenchymal stromal cells for cartilage regeneration»). Является автором 69 печатных работах, из которых 29 статей в отечественных, отечественных переводных и зарубежных журналах (23 - Scopus, 18 - Web of Science, 18 - РИНЦ), 40 тезисов докладов. Также результаты отражены в 2 монографиях, получено 2 патента РФ на изобретение.

Лечение остеоартроза представляет собой сложную задачу, поскольку заболевание часто сопровождается прогрессирующим разрушением суставных тканей, хроническим болевым синдромом и ограничением подвижности. Современные подходы к лечению направлены на формирование сложной архитектуры естественных тканей с помощью тканеинженерных конструкций. Целью исследования является создание материалов для регенерации хряща, сочетающих пористую структуру, механическую прочность и способность поддерживать взаимодействие с клетками. Материалы и методы. Децеллюляризацию микрочастиц хрящевой ткани свиньи проводили при комнатной температуре в трех сменах фосфатно-солевого буферного раствора, содержащего 0,1% додецилсульфат натрия и повышающуюся концентрацию Triton Х-100 (1–3%), с дополнительным воздействием ультразвука. Продукт ферментативной деградации (ПФДх) получали обработкой лиофилизованного децеллюляризованного хряща в растворе пепсина в течение 24 часов при комнатной температуре. Плоские пористые каркасы (ППК) изготавливали методом электроспиннинга на установке NANON-01A из раствора в гексафтоизопропаноле поликапролактона (ПКЛ) с добавлением лиофилизованного ПФДх (10% и 30% по весу полимера). Результаты. Сканирующая электронная микроскопия для всех типов каркасов подтвердила формирование пористой структуры с размерами волокон от сотен нм до 1–2 мкм и пор с размером, достаточным для инфильтрации клеток в объем каркаса. Композит с добавлением 10% ПФДх обладает максимальной прочностью 6,30±0,96 Н, по сравнению как с чистым ПКЛ, так и образцом, содержащим 30% ПФДх. При культивировании in vitro хондроцитов было обнаружено, что добавление 10% ПФДх к ПКЛ значительно повышало адгезию и пролиферацию клеток. В группе ПКЛ с добавлением 30% ПФДх на 7 сутки культивирования наблюдается менее равномерное распространение клеток по поверхности, кроме того, отмечалось большее количество мертвых клеток. Выводы. Композитные каркасы из ПКЛ с добавлением 10% ПФДх обладают высокопористой структурой, достаточной механической прочностью и способны поддерживать адгезию и пролиферацию хондроцитов, что делает их перспективными для разработки имплантатов хрящевой ткани в тканевой инженерии и регенеративной медицине.

Treatment of osteoarthritis is a complex task, since the disease is often accompanied by progressive destruction of joint tissues, chronic pain syndrome and limited mobility. Modern approaches to treatment are aimed at forming a complex architecture of natural tissues using tissue-engineered structures. The aim of the study is to create materials for cartilage regeneration that combine a porous structure, mechanical strength and the ability to maintain interaction with cells. Materials and methods. Decellularization of porcine cartilage microparticles was carried out at room temperature in three changes of phosphate-buffered saline containing 0.1% sodium dodecyl sulfate and an increasing concentration of Triton X-100 (1-3%), with additional exposure to ultrasound. The enzymatic degradation product (EDP) was obtained by treating lyophilized decellularized cartilage in a pepsin solution for 24 hours at room temperature. Flat porous scaffolds (FPS) were fabricated by electrospinning on a NANON-01A setup from a solution of polycaprolactone (PCL) in hexafluoroisopropanol with the addition of lyophilized EDP (10% and 30% by weight of the polymer). Results. Scanning electron microscopy for all types of scaffolds confirmed the formation of a porous structure with fiber sizes from hundreds of nm to 1-2 μm and pores with a size sufficient for cell infiltration into the scaffold volume. The composite with the addition of 10% EDP has a maximum strength of 6.30 ± 0.96 N, compared with both pure PCL and a sample containing 30% EDP. When culturing chondrocytes in vitro, it was found that the addition of 10% EDP to PCL significantly increased cell adhesion and proliferation. In the PCL group with the addition of 30% EDP, on the 7th day of cultivation, a less uniform distribution of cells over the surface was observed, in addition, a greater number of dead cells was noted. Conclusions. Composite scaffolds made of PCL with the addition of 10% EDP have a highly porous structure, sufficient mechanical strength and are able to maintain the adhesion and proliferation of chondrocytes, which makes them promising for the development of cartilage tissue implants in tissue engineering and regenerative medicine.